基本信息


姓名: 洪登峰 出生年月: 1980.9

性别: 硕/博导:

民族: 开设课程: 作物育种学

职称: 教授 研究方向: 油菜产量和育性的遗传机制

学位: 农学博士


联系方式
办公电话:87281713
            电子邮件:dfhong@mail.hzau.edu.cn


个人简介
洪登峰,男,作物遗传改良国家重点实验室油菜团队分子育种课题组(杨光圣组)研究成员。
           1997年进入华中农业大学农学专业学习,2001年获农学学士学位并考取本校硕博连读研究生,2007年获得农学博士学位并在植物科学技术学院任教,主要讲授《作物育种学总论》。
           2011年-2012年,在德国慕尼黑工业大学生命中心植物发育生物学领域从事访问研究。目前,我们主要针对油菜新品种选育过程中面临的主要挑战,期望从遗传机制的认识入手,进而提供相应的分子育种方案。主要研究方向包括:
           
           1,甘蓝型油菜雄性不育的分子机理解析
           雄性不育是油菜杂交种生产的重要途径之一,也是研究油菜有性生殖发育过程的优良材料。目前生产上希望选育雄性败育彻底(或育性转换彻底),不育表型稳定且对农艺和品质性状无不利影响的不育系。围绕这一问题,本课题组通过图位克隆方法已经成功的鉴定出核不育系Yi3A和9012AB中的育性基因Ms5、BnRf和BnMs3,正在研究细胞质雄性不育对温度的敏感性调控机制。期望通过上述研究,部分揭示其各天然雄性不育突变材料的育性调控分子机理,并揭示温度调控育性的作用机制。
           
           2,甘蓝型油菜产量构成因子和株型的遗传调控
           产量构成因子和株型作为育种的重要目标之一,是实现个体和群体产量最优组合的重要因素,亦是决定机械化收获的限制因子之一。本课题已成功克隆控制油菜每角果粒数的主效QTL位点qSS.C9,并初步揭示其通过调控大孢子母细胞减数分裂的步出而决定功能大孢子的形成。目前,正在利用近等基因系材料开展其它相关QTL的克隆。
           
           欢迎具备良好独立思考能力,对油菜遗传改良感兴趣的同学到本课题组开展研究工作。
           我们崇尚自由和平等,我们追求创新和实干。


科研项目

国家自然科学基金(31671724):BnMs5调控油菜减数分裂早期染色体行为及其复等位遗传的分子机制(2017.01-2020.12,主持);

国家重点研发计划(2017YFD0101702):长江中游油菜高产优质适宜机械化新品种培育(课题二,2017.07-2020.12,参与)


发明专利及获奖情况
1. 2011年,湖北省科技进步一等奖:“高产优质抗逆杂交油菜新品种“华油杂9号”的选育和推广应用“,排名第四
           2. 2009年,国家科技进步二等奖:“高产优质抗逆杂交油菜品种"华油杂5号、6号和8号"的选育推广”,排名第三
           3. 2009年,湖北省技术发明一等奖:“甘蓝型油菜生态型细胞质雄性不育两系的发现、研究与利用”,排名第三
           4. 2007年,湖北省科技进步奖一等奖:“高产优质抗逆杂交油菜新品种华油杂8号的选育和推广应用”,排名第三


发表的论文及著作
近五年发表的代表性论文:
     

1.Liu Z#, Dong FM#, Wang X, Wang T, Su R, Hong DF, Yang GS*. A pentatricopeptide repeat protein restores nap cytoplasmic male sterility in Brassica napus. J Exp Bot. 2017 Jul 10;68(15):4115-4123

2.Chen L#., Dong FM#., Cai J, Xin Q, Fang CC, Liu L, Wan LL, Yang GS*, and Hong DF*. A 2.833-kb insertion in BnFLC.A2 and its homeologous exchange with BnFLC.C2 during breeding selection generated early-flowering rapeseed. Mol Plant, 2017, 10.1016/j.molp.2017.09.020

3.Xin Q#, Shen Y#, Li X, Lu W, Wang X, Han X, Dong FM, Wan LL, Yang GS, Hong DF*, Cheng ZK*. MS5 mediates early meiotic progression and its natural variants may have applications for hybrid production in Brassica napus. Plant Cell, 2016, 28: 1263–1278

4.Liu Z#, Yang ZH#, Wang X, Li KD, An H, Liu J, Yang GS, Fu TD, Yi B*, Hong DF*. A Mitochondria-Targeted PPR Protein Restores pol Cytoplasmic Male Sterility by Reducing orf224 Transcript Levels in Oilseed Rape. Mol Plant, 2016, 9, 1082-1084

5.Deng ZH, Li X, Wang ZZ, Jiang YF, Wan LL, Dong FM, Chen FX, Hong DF*, Yang GS. Map-based cloning reveals the complex organization of the BnRf locus and leads to the identification of BnRfb, a male sterility gene, in Brassica napus. Theor Appl Genet, 2016, 129: 53-64

6.Li SP, Chen L, Zhang LW, Li X, Liu Y, Wu ZK, Dong FM, Wan LL, Liu KD, Hong DF*, Yang GS. BnaC9.SMG7b functions as a positive regulator of the number of seeds per silique in Brassica napus by regulating the formation of functional female gametophytes. Plant Physiol, 2015, 169: 2744-2760

7.Lu W, Liu J, Xin Q, Wan LL, Hong DF* and Yang GS*. A triallelic genetic male sterility locus in Brassica napus: an integrative strategy for its physical mapping and possible local chromosome evolution around it. Annals of Botany, 2013, 111: 305-315